免疫治疗与联合用药
研究免疫检查点抑制剂、免疫相关联合方案及治疗后的细胞和分泌因子变化。
技术平台
以ALI培养在同一三维体系中研究肿瘤组织结构、来源样本中保留的免疫细胞与药物反应,支持免疫治疗、检查点抑制剂和联合方案研究,并可结合组织学、流式与功能检测。
适用研究
研究免疫检查点抑制剂、免疫相关联合方案及治疗后的细胞和分泌因子变化。
观察样本中的T细胞、B细胞、NK细胞和巨噬细胞等免疫组分。
将H&E、IHC或IF结果与流式、细胞因子和药效结果进行对照分析。
适用于围绕肿瘤上皮表型、靶点表达和相对标准化药物反应开展研究。
将组织结构、样本免疫背景与处理反应纳入同一研究,并据此设计培养窗口与检测终点。
PDO 2.0项目与检测
查看TRiCBIO如何在ccRCC与NSCLC PDO 2.0研究中,结合组织形态、免疫表征和处理后的流式读数。
查看大图PDO 2.0免疫微环境项目:组织图像和流式检测用于观察免疫相关信号,以及处理条件下的早期凋亡和坏死变化;项目交付同步提供样本、处理和门控信息。
TRiCBIO ccRCC PDO 2.0免疫微环境项目数据原论文方法与功能证据
Figure 1呈现ALI患者来源肿瘤类器官的建立与跨癌种表征;Figure 7展示部分样本在PD-1相关处理条件下的TIL激活、扩增及肿瘤细胞杀伤研究。
TRiCBIO据此在PDO 2.0项目中配置样本基线表征、免疫组分确认和实验窗口设计。

图中结合培养形态、原组织/PDO组织学、谱系标志物和基因改变,呈现模型建立与身份表征过程。
Neal JT, Li X et al. Cell. 2018;175:1972–1988.e16, Figure 1.
图中联合比较免疫相关基线、细胞因子信号、TIL数量及肿瘤细胞杀伤,为免疫治疗研究提供多维功能评价。
Neal JT, Li X et al. Cell. 2018;175:1972–1988.e16, Figure 7.Nature Reviews Cancer在2019年以“Organoid 2.0”概括ALI肿瘤免疫类器官带来的技术进展,并在2024年系统梳理肿瘤—免疫类器官模型与应用。对于免疫治疗、复杂药物机制和组织层级反应研究,这一方向可在常规上皮类器官之外提供更丰富的组织与免疫背景。
文章以“Organoid 2.0”概括Cell 2018报道的ALI肿瘤免疫类器官:在肿瘤上皮之外纳入来源样本的组织结构与免疫背景,为研究肿瘤—免疫相互作用打开新的实验窗口。
DOI 10.1038/s41568-019-0108-x ↗2024 · 综述论文综述系统梳理肿瘤—免疫类器官模型、免疫分析方法及药物研究应用,进一步说明组织与免疫背景如何帮助理解治疗反应和作用机制。
DOI 10.1038/s41568-024-00706-6 ↗项目准备
围绕样本基线、候选物机制和研究终点,确定培养窗口、对照与检测组合,并形成便于复盘和后续研究的项目资料。
肿瘤类型、样本来源与状态、伦理文件、候选药物、给药方案及主要研究目的。
模型建立与质控、药物干预、H&E、IHC、IF、流式细胞术、细胞因子和TCR分析,并按项目加入功能终点。
模型质控结果、实验方法、原始数据、图像、统计分析、主要结果说明和研究报告。
检测终点根据组织结构、样本免疫背景与候选物机制组合,便于把不同维度的结果放在同一项目语境中解读。
讨论项目
介绍肿瘤类型、样本条件、候选物机制和希望观察的组织或免疫终点,科学团队会评估ALI培养、检测组合与研究安排。
技术平台
以ALI培养在同一三维体系中研究肿瘤组织结构、来源样本中保留的免疫细胞与药物反应,支持免疫治疗、检查点抑制剂和联合方案研究,并可结合组织学、流式与功能检测。
适用研究
研究免疫检查点抑制剂、免疫相关联合方案及治疗后的细胞和分泌因子变化。
观察样本中的T细胞、B细胞、NK细胞和巨噬细胞等免疫组分。
将H&E、IHC或IF结果与流式、细胞因子和药效结果进行对照分析。
适用于围绕肿瘤上皮表型、靶点表达和相对标准化药物反应开展研究。
将组织结构、样本免疫背景与处理反应纳入同一研究,并据此设计培养窗口与检测终点。
PDO 2.0项目与检测
查看TRiCBIO如何在ccRCC与NSCLC PDO 2.0研究中,结合组织形态、免疫表征和处理后的流式读数。
查看大图PDO 2.0免疫微环境项目:组织图像和流式检测用于观察免疫相关信号,以及处理条件下的早期凋亡和坏死变化;项目交付同步提供样本、处理和门控信息。
TRiCBIO ccRCC PDO 2.0免疫微环境项目数据原论文方法与功能证据
Figure 1呈现ALI患者来源肿瘤类器官的建立与跨癌种表征;Figure 7展示部分样本在PD-1相关处理条件下的TIL激活、扩增及肿瘤细胞杀伤研究。
TRiCBIO据此在PDO 2.0项目中配置样本基线表征、免疫组分确认和实验窗口设计。

图中结合培养形态、原组织/PDO组织学、谱系标志物和基因改变,呈现模型建立与身份表征过程。
Neal JT, Li X et al. Cell. 2018;175:1972–1988.e16, Figure 1.
图中联合比较免疫相关基线、细胞因子信号、TIL数量及肿瘤细胞杀伤,为免疫治疗研究提供多维功能评价。
Neal JT, Li X et al. Cell. 2018;175:1972–1988.e16, Figure 7.Nature Reviews Cancer在2019年以“Organoid 2.0”概括ALI肿瘤免疫类器官带来的技术进展,并在2024年系统梳理肿瘤—免疫类器官模型与应用。对于免疫治疗、复杂药物机制和组织层级反应研究,这一方向可在常规上皮类器官之外提供更丰富的组织与免疫背景。
文章以“Organoid 2.0”概括Cell 2018报道的ALI肿瘤免疫类器官:在肿瘤上皮之外纳入来源样本的组织结构与免疫背景,为研究肿瘤—免疫相互作用打开新的实验窗口。
DOI 10.1038/s41568-019-0108-x ↗2024 · 综述论文综述系统梳理肿瘤—免疫类器官模型、免疫分析方法及药物研究应用,进一步说明组织与免疫背景如何帮助理解治疗反应和作用机制。
DOI 10.1038/s41568-024-00706-6 ↗项目准备
围绕样本基线、候选物机制和研究终点,确定培养窗口、对照与检测组合,并形成便于复盘和后续研究的项目资料。
肿瘤类型、样本来源与状态、伦理文件、候选药物、给药方案及主要研究目的。
模型建立与质控、药物干预、H&E、IHC、IF、流式细胞术、细胞因子和TCR分析,并按项目加入功能终点。
模型质控结果、实验方法、原始数据、图像、统计分析、主要结果说明和研究报告。
检测终点根据组织结构、样本免疫背景与候选物机制组合,便于把不同维度的结果放在同一项目语境中解读。
讨论项目
介绍肿瘤类型、样本条件、候选物机制和希望观察的组织或免疫终点,科学团队会评估ALI培养、检测组合与研究安排。